Avaliação da resistencia dos microrganismos colhidos no ambiente de clinica odontologica a diferentes antibioticos
Aline de Barros Nobrega Dias Pacheco
DISSERTAÇÃO
Português
(Broch.)
T/UNICAMP P115a
Piracicaba, SP : [s.n.], 2000.
126p. : il.
Orientador: Thales Rocha de Mattos Filho
Dissertação (mestrado) - Universidade Estadual de Campinas, Faculdade de Odontologia de Piracicaba
Resumo: Deter a contaminação nos consultórios dentários tem sido uma tarefa muito difícil. Na maioria das vezes os microrganismos tem vencido as medidas de segurança adotadas, expondo profissionais e pacientes à situações de risco. Em escolas de Odontologia, esse risco é ainda maior, pois há...
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Resumo: Deter a contaminação nos consultórios dentários tem sido uma tarefa muito difícil. Na maioria das vezes os microrganismos tem vencido as medidas de segurança adotadas, expondo profissionais e pacientes à situações de risco. Em escolas de Odontologia, esse risco é ainda maior, pois há dificuldades na implementação de procedimentos de controle de infecção. Para identificar os microrganismos do ambiente clínico de uma Faculdade de Odontologia e avaliar a resistência antimicrobiana desses, foi desenvolvida esta pesquisa. Para isso utilizou se 60 placas de petri (15 cm de diâmetro), contendo ágar-soja-triptecaseína, dispostas em diversos locais da clínica (box, corredor, sala de esterilização e plantão de urgência) e em três situações: antes, durante e após a atividade. As placas foram abertas (120 segundos) e então fechadas e levadas à estufa (pressão de CO2 a 10% à 37ºC), durante 48 horas, e então transferidas para uma estufa em aerobiose (37ºC), por mais 24 horas. As unidades formadoras de colônias que cresceram foram contadas e fotografadas, e para a identificação utilizou-se a técnica de coloração de Gram. A resistência foi avaliada em placas de petri contendo ágar Muller Hinton, acrescido de 1,5°/0 de sangue de carneiro estéril previamente inoculadas com 100 µL dos microrganismos, onde foram inseridos discos de papel de 6,35mm contendo antibióticos, e os halos de inibição, que se desenvolveram após incubação, foram medidos. A análise estatística (KrusKall Wallis, 5%) mostrou diferença significante durante as diversas situações clínicas. Observou-se ainda que, de todos os microrganismos, 26% foram resistentes à penicilina G 10UI, 18% à ampicilina 10g, 19% à amoxicilina 10µg, 6% à amoxicilina 10µg + ácido clavulânico 20µg, 7% ao cefadroxil 30µg, 27% à eritromicina 15µg, 25% à daritromicina 15µg, 27% à azitromicina 15µg, 14% à clindamicina 2µg e 3% ao cloranfenicol 30µg. Condui-se que: 1) Durante atividade clínica há um maior crescimento de microrganismos, prevalecendo cocos, bacilos e fungos respectivamente; 2) A resistência encontrada foi maior para os antibióticos do 9rupo dos macrolídeos (26,4%), seguida pelo grupo das penicilinas (21,1%), sendo que a amoxicilina associada ao ácido clavulânico e o doranfenicol apresentaram as menores resistências, 6,47% e 2,8%, respectivamente
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Abstract: It has been a very hard task to stop contamination in dental clínies. Most of the times, microorganisms have beaten the preventive measures used exposing health practitioners and patients to risk situations. ln Dental Schools this risk becomes even higher, for three are difficulties...
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Abstract: It has been a very hard task to stop contamination in dental clínies. Most of the times, microorganisms have beaten the preventive measures used exposing health practitioners and patients to risk situations. ln Dental Schools this risk becomes even higher, for three are difficulties implementing procedures of infection control. This research was carried out in order to identify the microorganisms in the dental clínica I environment of a Faculty of Dentistry, and also to evaluate their resistance. For this purpose, 60 petri dishes (15 cm of diameter) with tripticasein soy agar were placed on different places in the clinic environment (between the dental clínies, on the corridors, sterilization room and emergency room) in three different situations: before, during and after the clinical work. The dishes were opened during 120 seconds, and then closed and incubated (at 10% CO2 pression) at 37°C, during 48 hours, and after moved to a stove at 37°C for 24 hours. The colony formation units (du) that grew on the dishes were counted and photographed. The Gram coloring technique for identification was applied. The resistance was evaluated on petri dishes with Muller Hinton agar plus 1.5% sheep blood sterile, previously inoculated with 100µg of microorganisms, there paper disks of 6.35 mm with antibiotics were placed. After incubation, the halos, which developed, were measured. The statistical analysis (KrusKaIl-Wallis 5%) showed significant difference during the various clinical situations. It was observed that 26% of the microorganisms were resistant to penicillin G [10Ul], 18% to ampicillin [10µg], 6% to amoxycillin [10µg] associated with clavulanic acid [20µg], 7% to cefadroxil [30µg], 27% to erythromycin [15µg], 27% to azithromycin [15µg], 250% to clarithromycin [15µg], 14% to clyndamicin [2µg] and 3% to cloranphenicol [30µg]. Therefore, it was concluded that: a) During clinical work there is a higher growth of microorganisms, being the most predominant cocci, bacillus and fungus, respectively; b) The higher resistance found was to the antibiotics from the macrolides group (26%), followed by the penicillin group (21%), having amoxycillin associated with clavulanic acid and doranphenicol, showed the lowest resistance
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